Материал при патологоанатомическом исследовании описывают

ВИДЫ БИОПСИЙ И ПОРЯДОК ПОСТУПЛЕНИЯ БИОПСИЙНОГО МАТЕРИАЛА НА ГИСТОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

В клинике используют несколько способов взятия биопсийного материала: открытый, пункционный, аспирационный, эндоскопический, трепанобиопсия. Кроме того, важное значение имеет цитологический метод (мазки, отпечатки и т.д.), связанный с минимальной травмой при взятии материала и возможностью проведения исследования в экстренном порядке. Гистологические и цитологические методы взаимно дополняют друг друга.

Существует сложившийся порядок поступления биопсийного материала в патогистологическую лабораторию.

1. Материал, предназначенный для гистологического исследования, должен иметь четкую маркировку и сопровождаться направлением. Материал от одного больного должен быть помещен в отдельную посуду. Этикетку из плотной, неразмокающей в воде бумаги (лучше фотобумаги) прикрепляют к объекту. Надписи делают только мягким простым карандашом.

2. Фиксацию производят в предоперационной, куда заранее доставляют в достаточном количестве 10 % нейтральный формалин.

3. Стандартный бланк направления на патогистологическое исследование заполняет и подписывает лечащий врач. При этом в направлении отражают такие клинические данные, как продолжительность заболевания, характер проведенного лечения, результаты предыдущих исследований, если они проводились. При наличии опухоли необходимо указать ее точную локализацию, темпы роста, размеры, консистенцию, отношение к окружающим тканям, наличие метастазов и других опухолевых узлов, специальное лечение и клинический диагноз. Если в направлении отсутствуют необходимые данные, заведующий патологоанатомическим отделением ставит об этом в известность заведующего того отделения, откуда была прислана биопсия, а при повторных случаях сообщает администрации.

5. При приеме материала в направление и журнал поступлений вписывают порядковый номер патогистологического исследования каждого объекта и время поступления материала, а также указывают характер биопсии — диагностическая, срочная, операционный материал, количество кусочков, методики окраски.

6. Материал диагностической биопсии запрещается делить на части и посылать их в разные патогистологические лаборатории, то же самое относится и к материалу для цитологического исследования.

7. Ответственность за качество доставленного в лабораторию материала несет врач, назначивший данное исследование. Подсохший, загнивший, замороженный, нефиксированный материал не принимают в патогистологическое отделение и о таких фактах сообщают администрации лечебного учреждения.

8. Если по условиям работы невозможно сразу отправить из операционной материал в патогистологическую лабораторию, то хирург, проводивший операцию, обеспечивает правильную фиксацию материала и его сохранность.

После регистрации из присланного на исследование объекта вырезают необходимое количество кусочков. Материал, полученный методом соскоба, в том числе при гинекологическом исследовании, аспирационных и других биопсиях, а также трепанобиопсии, исследуют целиком.

Совершенствование методов диагностики и развитие гистологической техники направлены на уменьшение продолжительности приготовления качественных препаратов с целью обеспечения быстрого и точного установления диагноза. Если раньше результаты микроскопического исследования и ответ на биопсию можно было получить через 4—5 сут от момента поступления материала, то теперь продолжительность исследования уменьшилась до 1 сут, а при четко организованной работе и наличии современного оснащения весь процесс можно завершить за несколько часов.

Заключение подписывают патологоанатом и лаборант. Все заключения, основанные на данных срочных биопсий, чаще всего носят предварительный характер, поэтому должны быть подтверждены после заливки оставшегося операционного материала с изготовлением достаточного количества срезов, по результатам исследования которых дают окончательное заключение.

ОСОБЕННОСТИ ОБРАБОТКИ МАТЕРИАЛА БИОПСИЙ РАЗНЫХ ОРГАНОВ

Основные приемы взятия образцов ткани, с помощью которых можно получить максимум информации о структуре органа и ее изменениях, изложены в руководствах по гистологической технике и в монографиях, посвященных патологии различных ор­ганов и тканей, а также в некоторых главах настоящего руко­водства. В связи с этим целесообразно остановиться лишь на некоторых основных особенностях взятия наиболее часто исследуемого материала и его обработки с применением ускоренных методик.

Прежде всего следует упомянуть о правильном иссечении кусочков из органов, которое производят острыми инструментами: скальпелем, лезвием бритвы, малыми глазными ножницами и др. Недопустимы деформация и механическое повреждение ткани, поэтому кусочки губчатой кости не следует откусывать кусачками, а рекомендуется использовать пилящие инструмен­ты. Если ткань компактна и структуры распределены в органе относительно равномерно, то кусочек вырезают из любого отдела вместе с капсулой (печень, селезенка, поджелудочная железа и др.). Кусочки из почек и надпочечников вырезают так, чтобы на срезе имелось и корковое, и мозговое вещество. Полые органы исследуют на поперечных сечениях, проходящих через все слои стенки. Если при макроскопическом исследовании в ткани обнаружены патологические изменения (опухоли, эрозии, инфильтраты), то кусочки обязательно иссекают на границе с нормальным участком ткани. Особенно важно место перехода нормальной ткани в опухолевую.

В том случае, если для исследования прислан достаточно крупный объект, его следует разрезать на пластины толщиной до 5 мм и изучать с помощью бинокулярной лупы или стереомикроскопа для ориентировочной дифференциации дисгормональных, диспластических процессов в железистых органах (сохранение дольчатости, наличие узлов, однородности, мелкозернистой структуры) и опухолей (фокусы уплотнения, «стекловидные» поля, сосочковые структуры, псаммомные тельца, очаги некроза, обызвествления). Кроме того, благодаря этому исследованию можно правильно сориентировать мелкие кусочки биоптатов на блоке.

Вырезанные кусочки ткани должны иметь размер не более 1,5х1х0,5 см, оптимальный для быстрой фиксации и проводки материала. В случае необходимости свежий материал можно промыть в изотоническом растворе хлорида натрия, а затем фиксировать. Промывание в воде нефиксированного материала недопустимо.

При эндоскопических и пункционных биопсиях желудка или прямой кишки, когда количество материала ограничено, следует разрезать цилиндрический кусочек на 2 части так, чтобы на срезе была слизистая оболочка и подслизистая основа. При биопсии почки кусочек надо ориентировать так, чтобы на срезе было корковое и мозговое вещество. Одну часть пунктата заливают в парафин для гистологических и гистохимических исследований, другую используют для электронно-микроскопического исследования и/или флуоресцентной микроскопии.

Кожа. Лучшим фиксатором для биоптатов кожи является жидкость Карнуа . Продолжительность фиксации 2 ч при 4 °С. Для того чтобы избежать пересушивания, в качестве промежуточной среды лучше использовать хлороформ. Продольные кусочки кожи заливают в боковом положении, чтобы срез проходил через все слои эпидермиса и дермы. При получении срезов с парафиновых блоков часто применяют охлаждение объекта кубиком льда. Помимо окраски гематоксилином и эозином, кожу обязательно окрашивают по Ван-Гизону, импрегнируют по Гомори и выявляют кислые гликозаминогликаны толуидиновым синим, т.е. исследуют с помощью методик, применяемых при изучении соединительной ткани. В случае наличия участка кожи с пигментным новообразованием вырезают от 2 до 6 кусочков ткани толщиной 3—4 мм. На срезе должен быть и неизмененный участок кожи. При изучении пигментного невуса обычно применяют реакцию Перлса, ДОПА-реакцию и метод Фонтана— Массона.

Молочная железа. Возможны три типа образцов тканей молочной железы: 1) кусочки, полученные при диагностических биопсиях; 2) участки ткани после секторальной резекции с удаленными подмышечными лимфатическими узлами или без них; 3) железа после радикальной мастэктомии. После тщательной пальпации присланного материала выявляют более плотные участки, которые иссекают и нумеруют. Часть железы после секторальной резекции или орган после радикальной мастэктомии рассекают в плоскости хода протоков, патологически- измененные участки вырезают и фиксируют в 10 % нейтральном формалине.

Органы желудочно-кишечного тракта. При изучении патологии пищеварительной системы следует учитывать гистологическое строение исследуемого отдела и соответственно этому правильно ориентировать материал. Например, слюнные железы располагают так, чтобы в срез попали выводные протоки. При изучении пищевода продольно иссеченные полоски ткани должны включать макроскопически неизмененную слизистую оболочку и край новообразования или язвы.

Эндоскопические гастробиоптаты часто имеют небольшие размеры, поэтому их проводят в 2—3-слойном марлевом мешочке и заливают в один блок. Л. И. Аруин и соавт. (1993) реко­мендуют приклеивать биоптаты на полоску печеночной ткани или помещать их в небольшой разрез кусочка печени с последующим смыканием края разреза. Размещение кусочков слизи­стой оболочки, полученных от одного больного из различных ее участков или от разных больных, на печени позволяет проводить достоверное сопоставление различных объектов и при микроскопировании идентифицировать кусочки, относящиеся к разным отделам.

Операционный материал может быть представлен иссеченным новообразованием, удаленным желудком или его частью вместе с опухолью. Макроскопическое исследование желудка В.А. Самсонов (1989) рекомендует производить до фиксации, при которой происходит деформация органа. После продольного рассечения желудка вне опухоли измеряют размеры его по малой и большой кривизне, затем рассекают всю стенку желудка через опухоль. При язвенном дефекте вырезают либо продольную пластинку ткани через весь дефект, либо производят крестообразное иссечение материала, что позволяет исследовать края язвы с четырех сторон. При наличии полипозного образования срез проводят через ножку полипа. Если имеется несколько полипов, то необходимо брать материал из каждого. Существует определенный набор методик, рекомендуемых для изучения материала биопсий желудка: окраски гематоксилином и эозином, пикрофуксином по Ван-Гизону, кармином, альциановым синим, применяют также ШИК-реакцию. Особенно информативна методика, сочетающая ШИК-реакцию с обработкой срезов реактивом Романовского—Гимзы.

При исследовании резецированной толстой кишки материал вырезают через ножку полипа или середину язвы, чтобы эти изменения попали на срез.

Червеобразный отросток вскрывают острым ножом по длине либо делают поперечные срезы. Если макроскопически изменения отростка распределены неравномерно, то вырезают участки с наибольшими и наименьшими изменениями , уделяя особое внимание перфорациям и дивертикулам. Освободив отросток от содержимого, описывают обнаруженные при этом инородные тела, паразиты и др., затем осматривают его слизистую оболочку. При аппендиците она набухшая, полнокровная часто с кровоизлияниями и не­глубокими язвами.

Вырезанные и фиксированные в 10 % нейтральном формалине кусочки отростка режут на замораживающем микротоме или заливают в парафин, окрашивают обычно только гематоксили­ном и эозином.

Желчный пузырь необходимо фиксировать сразу же после его удаления. Орган разрезают вдоль, удаляют желчь и растягивают пузырь на картоне слизистой оболочкой вверх. Иногда желчь из полости пузыря извлекают шприцем, а затем заполня­ют его фиксирующей жидкостью. При наличии на внутренней поверхности язвенных дефектов или опухолевых разрастаний необходимо их подробно описать, измерить, отмечая локализацию и отношение к различным слоям стенки пузыря. Вырезают кусочки из участков с наибольшими и наименьшими изменениями органа. По данным Г. Г. Автандилова (1994), качество срезов повышается при заливке кусочков ткани желчного пузыря в целлоидин-парафин.

Поджелудочную железу рекомендуют фиксировать сразу же после удаления, так как ткань органа быстро подвергается аутолизу. Разрезы делают по ходу протоков. Помимо рутинных методов окраски, используют окрашивание препаратов по Маллори, Гомори, альдегид-фуксином.

Биоптаты печени фиксируют в 10 % забуференном формалине, а если предполагается выявление гликогена, то используют фиксатор Карнуа. При этом продолжительность фиксации мелких биоптатов должна быть не более 30 мин, что не всегда возможно. После заливки в парафин с каждого блока готовят 25— 30 срезов и помещают их на 4—5 предметных стекол. Используют окраски гематоксилином и эозином, по Ван-Гизону, иногда импрегнацию по Гомори и выявление железа по Перлсу. Кроме того, при исследовании материала биопсий печени очень важно выявление поверхностного антигена гепатита В по методу, предложенному Т. Shikata и соавт. (1973).

1. После депарафинирования срезы помещают на 10 мин в смесь 5 % перманганата калия

(9,5 мл), 3 % серной кислоты (5 мл), дистиллированной воды до 100 мл.

2. Обесцвечивают в течение 10 мин в 2 % щавелевой кислоте.

3. Промывают в проточной воде.

4. Окрашивают 4 ч при 22 °С в смеси, состоящей из 1 г орсеина, 100 мл 70 % спирта и 2 мл концентрированной соляной кислоты (рН 1,0—2,0).

5. Дифференцируют в 1 % соляной кислоте на 70 % спирте 5 мин. Промывают в проточной воде, обезвоживают, заключают в бальзам.

Результат: HBs-антиген, эластические волокна и белковые комплексы окрашиваются в коричневый цвет1.

Органы дыхания. Гистологическому исследованию подвергают чаще всего кусочки из полости носа, синусов гортани, бронхов, легкого. Кусочки из резецированной гортани иссекают вертикальными разрезами, проходящими через опухоль и голосовые складки. Биоптаты, полученные при бронхоскопии, фиксируют в нейтральном 10 % формалине и компактно, в одном блоке, заливают в парафин. Наибольшей информативностью для эндоскопических бронхобиопсий обладает электронно-микроскопический метод исследования в комбинации с изучением полутонких срезов . При вырезке ткани легкого для гистологического исследования учитывают сегментарное строение органа. Срез должен проходить продольно через бронх и его ветви. С тканью легкого рекомендуется работать после хорошей фиксации материала в 10 % нейтральном формалине, так как работа с этим органом на замораживающем микротоме и в криостате связана с риском инфицирования туберкулезом и другими инфекциями. Плевру изучают на срезах, идущих перпендикулярно к ее поверхности. Из гистологических методов чаще всего применяют окраску гематоксилином и эозином в сочетании с предварительно проводимой реакцией Перлса на железо и окраску пикрофуксином по Ван-Гизону в комбинации с резорцин-фуксином, окрашивающим эластичес­кий каркас легкого; используют также методы, позволяющие выявить слизь и кератин.

Мочеполовая система. Почку после нефрэктомии или ее удаленную часть разрезают от наружной поверхности продольно по направлению к воротам, затем иссекают кусочки треугольной формы, включающие корковое и мозговое вещество. Материал, полученный в результате пункционной биопсии почки, фиксируют в 10 % нейтральном формалине и заливают в парафин. Срезы толщиной 4—6 мкм окрашивают гематоксилином и эозином, пикрофуксином по Ван-Гизону, азаном по Гейденгайну, конго красным, проводят ШИК-реакцию. Для дифференциальной диагностики используют также иммуногистохимический метод Кунса с применением моноспецифических сывороток.

При исследовании резецированного мочевого пузыря вырезают кусочки измененной ткани и прилежащие к ней неизмененные участки. Материал фиксируют в 10 % нейтральном формалине и окрашивают гематоксилином и эозином, по Ван-Гизону и резорцин-фуксином’.

Патологию мочеточника изучают на поперечных срезах, применяя стандартный набор общепринятых методов гистологичес­кого исследования.

Предстательную железу (после вырезки и фиксации) изучают на горизонтальных срезах органа, которые окрашивают гематоксилином и эозином и по Ван-Гизону. Эндоуретальные и игловые биоптаты предстательной железы обрабатывают так же, как и материал других пункционных биопсий: проводят в мешочках из нескольких слоев марли по ускоренному методу для мелких объектов, заливают в парафин в один блок, режут практически весь материал и помещают срезы на 5—6 предметных стекол, часть из которых окрашивают тремя основными методами, остальные хранят в архиве.

Яичко, поступившее на гистологическое исследование, рассекают по длинному диаметру и вырезают до фиксации. В случае необходимости до фиксации проводят забор материала для бактериологического исследования. Фиксировать этот орган лучше в жидкости Карнуа, но можно использовать и 10 % нейтральный формалин.

Половой член и мошонку исследуют на продольных разрезах, проводка, фиксация и методы окраски обычные.

При обработке материала биопсий вульвы срезы должны проходить перпендикулярно поверхности препарата в направлении его длинной оси. Материал биопсии рекомендуют фиксировать в 10 % нейтральном формалине. Эндоцервикальные соскобы часто содержат кровь и слизь. Материал исследуют полностью после предварительного промывания в изотоническом растворе хлорида натрия на фильтровальной бумаге.

Для исследования конических биопсий шейки матки требуется четкая пространственная ориентация очага поражения. Для этого рекомендуют прошить участок шейки матки в точке, соответствующей 12 часам циферблата. Интраэпителиальная опухоль шейки матки часто обнаруживается в зоне перехода плоского эпителия в железистый. Материал конической биопсии рассекают в зоне 3 часов циферблата, где опухолевый рост наименее вероятен. Раскрытую шейку прикрепляют булавками к пробковой основе и фиксируют в течение 3 ч. Вырезку производят серийно и блоки помещают в отдельные кассеты.

Соскобы эндометрия (весь материал, включая небольшое количество свертков крови) помещают в двухслойный марлевый мешочек, фиксируют, промывают, обезвоживают и заливают в парафин. Общая продолжительность проводки 2—3 ч. Получать срезы на замораживающем микротоме не рекомендуют. Препараты окрашивают гематоксилином и эозином, по Ван-Гизону, муцикармином или альциановым синим.

Операционный материал, полученный при тотальной и радикальной вульвэктомии, должен быть расправлен, фиксирован, а затем рассечен с интервалом 0,5 см. Влагалище следует вскрывать продольно по стороне, противоположной опухоли; берут также кусочки из краев операционного разреза и всех лимфатических узлов, обнаруженных в удаленных мягких тканях. Полость матки вскрывают перед фиксацией с помощью Т образного разреза, производимого по передней стенке. В дальнейшем разрезы выполняют по правилам, принятым в прозекторской практике. Не следует расчленять материал на куски. Яичники, удаленные во время гистерэктомии, взвешивают и измеряют, а затем разрезают сагиттально в направлении наибольшего диаметра с включением в срез области ворот. При наличии кист вырезают участки утолщения стенки кисты. Гистологические препараты окрашивают гематоксилином и эозином и по Ван-Гизону.

Щитовидная железа. Особенность обработки ткани щитовидной железы связана с выраженным сморщиванием тиреоидной ткани при фиксации и заливке в парафин, поэтому Н.Н. Гольдбурт (1993) рекомендует пользоваться замороженными срезами. Предварительно ткань изучают с помощью стереомикроскопа и из подозрительных участков вырезают кусочки, которые помещают на столик микротома в виде единого блока так, чтобы в полученном срезе была максимально представ­лена капсула узла.

Надпочечник. Его рассекают по длинной оси, хромаффинную ткань исследуют полностью.

Трепанобиопсии. Материал поступает в виде трепанатов костного мозга и кусочков губчатой кости. После фиксации в 10 % нейтральном формалине или ценкер-формоле и промывания в проточной воде материал декальцинируют в 50 % растворе муравьиной кислоты, разбавленной 70 % спиртом; продолжительность декальцинации от 12 до 24 ч в зависимости от величины кусочков. Быстро хорошие результаты дает декальцинация в трилоне Б. От кислоты материал отмывают в нескольких порциях 70 % спирта, затем обезвоживают и обезжиривают в 2 сменах 96 % и 100 % спирта, заливают в парафин через хлороформ (1 — 2 ч), хлороформ-парафин при 37 °С (1 ~2 ч), парафин при 56 °С (1—2 ч). Г.А. Меркулов (1969) рекомендует для этого материала заливку в целлоидин-парафин. Наряду с обзорными окрасками при изучении материала трепанобиопсий применяют реакции на пероксидазу, липиды с суданом черным, гликоген с помощью Шик реакции, неспецифическую эстеразу, кислую фосфатазу.

Селезенка и лимфатические узлы. Селезенку разрезают по большему диаметру, вырезают 3—4 кусочка и фиксируют в 10 % нейтральном формалине. Препараты окрашивают гематоксилином и эозином и по Ван-Гизону. Особое внимание требуется при исследовании лимфатических узлов, являющихся как органами иммуногенеза, так и коллекторами метастазов злока­чественных опухолей. Их измеряют, взвешивают, а затем после рассечения по малому диаметру погружают в фиксатор (10 % нейтральный формалин или жидкость Карнуа).

Возглавляет отделение Ковригина Алла Михайловна.

Основными направлениями работы патологоанатомического отделения являются диагностика опухолевых и неопухолевых заболеваний лимфоидной ткани, системы крови на основании исследования трепанобиоптатов костного мозга, биопсийного материала лимфатических узлов, органов облигатного кроветворения, лимфоидных тканей других локализаций с использованием гистологического, гистохимического, иммуногистохимического, in situ hybridization методов исследования. Патологоанатомическое отделение выполняет функции референсного центра и проводит большой объем консультативной диагностической работы по исследованию биопсийного материала (парафиновые блоки, готовые препараты и биопсийный/операционный материал, присланный в 10% нейтральном формалине) из различных городов, регионов Российской Федерации, ряда республик СНГ.

Исследования проводятся на материале трепанобиопсий костного мозга, биопсийном материале, полученном при cor-биопсиях, эксцизионных и энцизионных биопсиях лимфатических узлов, при эндоскопических исследованиях (в том числе, торакоскопии, лапароскопии), операционном материале, в частности, при торакотомиях и лапаратомиях, спленэктомиях. В отделении осуществляется интраоперационная (срочная) гистологическая диагностика при биопсиях новообразований забрюшинной локализации, средостения, легких, лимфатических узлов.

Справа налево: Рощина Людмила Сергеевна, научный сотрудник, врач-патологоанатом, кандидат медицинских наук; Коржова Светлана Михайловна, врач-патологоанатом; Плискунова Юлия Владимировна, аспирант патологоанатомического отделения, врач-патологоанатом.

Разработка критериев комплексной дифференциальной диагностики В- и Т-лимфом, лимфомы Ходжкина, Ph-негативных миелопролиферативных заболеваний, миелодиспластических синдромов, гипопластических состояний кроветворной ткани являются приоритетными научными направлениями патологоанатомического отделения.

Отделение располагает отдельными помещениями для архива гистологических, гистохимических, иммуногистохимических препаратов, парафиновых блоков, архивного «сырого» материала в формалине, учебной комнатой, оснащенной «многоголовым» микроскопом (Multi-head-микроскоп) с проекцией на широкоплазменный экран для одновременного участия в учебном процессе до 20 патологоанатомов. На базе патологоанатомического отделения ФГБУ НМИЦ гематологии МЗ РФ проводятся рабочие совещания и семинары для врачей-патологоанатомов России. Совместно с кафедрой патологической анатомии, молекулярной патологии и цитологии ФГБОУ ДПО Института повышения квалификации ФМБА РФ — тематические циклы усовершенствования по гемопатологии для врачей-патологоанатомов. Проходят обучение ординаторы и аспиранты НМИЦ гематологии по специальности «патологическая анатомия». Темы для учебного процесса охватывают круг вопросов от патоморфологичеслой диагностики неопухолевых процессов, гематологических и онкогематологических заболеваний на материале трепанобиоптатов костного мозга, лимфатических узлов, новообразований средостения, забрюшинного пространства, экстранодальных лимфоидных пролифератов.

История патологоанатомического отделения

Краевский Николай Александрович (1905—1985 гг.) — патологоанатом, профессор, академик АМН СССР, лауреат Ленинской премии, основатель нескольких научных школ по гемопатологии: в Центральном ордена Ленина Институте гематологии и переливания крови (ЦОЛИПК, ныне — ФГБУ Гематологический научный центр МЗ РФ) и Институте экспериментальной и клинической онкологии (позднее — Всесоюзный онкологический научный центр РАМН, ныне — Российский онкологический научный центр им. Н. Н. Блохина МЗ РФ), научной школы патологов-радиобиологов (Институт биофизики МЗ СССР), научной школы онкопатологов (ныне — Российский онкологической научный центр им. Н.Н.Блохина МЗ РФ).

В ЦОЛИПК Н. А. Краевский руководил лабораторией патологической анатомии с 1939 по 1955 гг. Вместе со своими сотрудниками (Н. М. Неменова, М. П. Хохлова, Н. С. Розанова и др.), а также в содружестве со специалистами других отделов института (М. С. Дульцин, Х. Х. Владос, Э. З. Новикова) он создал учение о патологии трансфузиологии, патологии лейкозов и других заболеваний системы крови. В 1965 году в свет вышел сборник «Патологическая анатомия и вопросы патогенеза лейкозов», написанный Н. А. Краевским, Н. М. Неменовой, М. П. Хохловой, в которой был обобщен уникальный опыт. Книга на долгие годы стала настольной книгой для нескольких поколений гемопатологов страны.

Синицына Марина Николаевна, научный сотрудник, врач-патологоанатом (слева); Глинкина Светлана Александровна, врач-патологоанатом.

В связи с созданием ядерного оружия и атомной промышленности в нашей стране в 1950 г. Н. А. Краевский был привлечен к проведению медико-биологических исследований и возглавил изучение патологии лучевой травмы и лучевой болезни, создав на базе Института биофизики МЗ СССР крупный отдел патологической анатомии. Для исследовательской работы Николай Александрович Краевский объединил молодых патологоанатомов (В. В. Шиходыров, Н. Н. Литвинов, Г. А. Лебедева, Ю. Н. Соловьев, В. И. Пономарьков) и группу опытных специалистов (Л. А. Африканова, А. Е. Иванов, А. Н. Новикова, Е. В. Эрлексова и др.). В достаточно короткие сроки под руководством Н. А. Краевского был изучен комплекс основных патологических синдромов острой, а затем и хронической лучевой болезни. Позже тот же коллектив исследовал отдаленные последствия лучевого поражения и канцерогенное действие ионизирующего излучения. Уже в 1957 году Н. А. Краевский одним из первых в мире опубликовал монографию «Очерки острой лучевой болезни», а в 1963 в составе группы ученых и специалистов за работы в области изучения лучевой патологии был удостоен Ленинской премии по науке и технике. Таким образом, он стал основателем еще одной отечественной научной школы — патологов-радиобиологов. В 1962 году Н. А. Краевский по приглашению Н. Н. Блохина переходит в Институт экспериментальной и клинической онкологии (позднее —Всесоюзный онкологический научный центр РАМН, Российский онкологический научный центр имн. Н. Н. Блохина МЗ РФ), где создает крупный отдел патологической анатомии опухолей человека. В эти годы под руководством Николая Александровича Краевского проводятся углубленные комплексные исследования опухолей различной локализации, продолжается изучение патологической анатомии гемобластозов, лимфом (Н. А. Пробатова, Н. Н. Покровская, А. И. Павловская).

Шуплецова Ирина Александровна, врач патологоанатомического отделения, к. м. н.

С участием сотрудников отдела Н. А. Краевский подготовил и в 1971 году опубликовал первое полное отечественное издание для врачей «Руководство по патологоанатомической диагностике опухолей человека», которое перерабатывалось, дополнялось и к 1993 году вышло уже 4-м изданием. Данное руководство до настоящего времени остается настольной книгой для многих патологоанатомов. Николай Александрович Краевский преподавал на кафедрах патологической анатомии 2-го Московского медицинского института и Института усовершенствования врачей.

Неменова Надежда Максимовна (1911—1981 гг.) — патологоанатом, доктор медицинских наук, профессор. С 1955 г. в течение 25 лет возглавляла патологоанатомическую лабораторию в Центральном ордена Ленина Институте гематологии и переливания крови. С именем Надежды Максимовны Неменовой связана разработка вопросов патогенеза заболеваний системы крови и посттрансфузионных осложнений, ею была предложена классификация посттрансфузионных осложнений. Одним из разделов научной работы стало изучение реакции кроветворной ткани при негематологических заболеваниях (инфекции, заболевания печени). Одной из первых в СССР Н. М. Неменова внедрила в повседневную практику врача-патологоанатома метод прижизненного гистологического исследования костного мозга, под ее руководством были разработаны принципы диагностики заболеваний системы крови на материале трепанобиопсий костного мозга.

Кольберг Мария Александровна, биолог (иммуногистохимические исследования) у иммуностейнера BOND-MAX (Leica).

Хохлова Маргарита Петровна (1921—2008 гг.) — патологоанатом, доктор медицинских наук, профессор. Научно-практическая деятельность Хохловой М. П. с 1946 года связана с Центральным научно-исследовательским институтом гематологии и переливания крови (с 1989 г. — Гематологический научный центр РАМН, в настоящее время — ФГБУ Гематологический научный центр МЗ РФ). С 1978 г. по 1988 г. Хохлова Маргарита Петровна — руководитель патологоанатомического отделения. Разработку патологоанатомической диагностики заболеваний системы крови Хохлова М. П. сочетала с исследованиями в области эпидемиологии лейкозов, что имело большое значение для практического здравоохранения. Хохловой М. П. была начата разработка критериев диагностики злокачественных лимфом и вторичных нарушений с помощью иммуногистохимических методов исследования.

Франк Георгий Авраамович (род. в 1936 г.) — патологоанатом, доктор медицинских наук, профессор, академик РАН, Главный внештатный специалист по патологической анатомии, заслуженный деятель науки Российской Федерации. Франк Георгий Авраамович руководил патологоанатомическим отделением Гематологического научного центра РАМН с 1989 по 2010 гг. С 1961 года Георгий Авраамович Франк — аспирант кафедры патологический анатомии Центрального ордена Ленина Института усовершенствования врачей. Успешно окончил аспирантуру, защитив кандидатскую диссертацию на тему на тему «Морфологические изменения печени при лейкозах». С 1964 г. Г. А. Франк работает в Научно-исследовательском онкологическом институте им. П. А. Герцена, где он прошел путь от младшего научного сотрудника до руководителя отделения патоморфологии опухолей. В 1981 г. защитил докторскую диссертацию, посвященную клинической морфологии лимфогранулематоза. С 1988 г. Франк Г. А. — профессор, в 2002 году избран член-корреспондентом РАМН. Георгий Авраамович Франк разработал и внедрил ряд новых методов морфологической диагностики, одним из первых в стране использовал современные молекулярно-биологические и иммуногистохимический методы исследования в патологической анатомии. Научные интересы Франка Г. А. охватывают широкий круг проблем онкоморфологии и включают диагностику предраковых состояний, ранних форм рака различных локализаций, вопросы патогенеза и диагностики опухолей костей, молочной железы, легких, предстательной железы, шейки матки, дифференциальную диагностику заболеваний системы крови с использованием молекулярно-биологических, иммуногистохимического методов исследования.

Коллектив отделения

Учебная комната. Врачи-патологоанатомы — курсанты цикла тематического усовершенствования по гемопатологии кафедры патологической анатомии, цитологии и молекулярной патологии ФГБОУ ДПО Института повышения квалификации ФМБА РФ.

Рощина Людмила Сергеевна — научный сотрудник, врач-патологоанатом, кандидат медицинских наук, тема научных исследований — парапротеинемические гемобластозы, диагностика инфекционных осложнений у гематологических больных.

Синицына Марина Николаевна — научный сотрудник, врач-патологоанатом, онкоморфолог, гемопатолог, тема научных исследований — диагностика периферических Т-клточных лимфом.

Глинкина Светлана Александровна — врач-патологоанатом, тема научных исследований — диагностика миелодиспластических синдромов, условий гипоплазии кроветворной ткани.

Плискунова Юлия Владимировна — врач-патологоанатом, аспирант патологоанатомического отделения, тема научных исследований — дифференциальная диагностика Ph-негативных миелопролиферативных заболеваний, заболеваний из группы МДС/МПЗ.

Коржова Светлана Михайловна — врач-патологоанатом, тема научных исследований — диагностика лимфопролиферативных заболеваний с вовлечением костного мозга, дифференциальная диагностика лимфом селезенки.

Кольберг Мария Александровна — специалист-биолог (иммуногистохимические и in situ hybridization диагностические и научные исследования).

Дейнеко Наталья Леонидовна — научный сотрудник, кандидат биологических наук (иммуногистохимические/ иммунологические и in situ hybridization диагностические и научные исследования).

Медицинские лабораторные техники (фельдшеры-лаборанты): Михалева Марина Васильевна, Саенко Наталья Анатольевна, Теляковская Анна Владимировна, Титова Олеся Валерьевна, Костина Анна Анатольевна, Спесивцева Елена Валерьевна, Горохова Виктория Владимировна.

Медицинский лабораторный технолог: Большакова Мария Борисовна.

Титова Олеся Валерьевна, медицинский лабораторный техник (фельдшер-лаборант), у апппаратов для проводки биопсийного, опрационного материала, трепанобиоптатов костного мозга.

Саенко Наталья Анатольевна, медицинский лабораторный техник (фельдшер-лаборант) у аппаратов для гистологической и гистохимической окрасок, заключения препаратов под покровные стекла.

Теляковская Анна Владимировна (на первом плане), медицинский лабораторный техник (фельдшер-лаборант) в рабочей комнате у роторного микротома «Leica».

Рабочее место патологоанатома с цифровой системой макроскопического анализа изображений и исследования секционного, операционного и биопсийного материала «Макропат». На заднем плане — криостат для изготовления свежезамороженных срезов во время интраоперационной диагностики.

Михалева Марина Васильевна (в центре), медицинский лабораторный техник (фельдшер-лаборант), и Горохова Виктория Владимировна (справа), медицинский лабораторный техник (фельдшер-лаборант), в регистратуре патологоанатомического отделения.

Большакова Мария Борисовна (слева) — медицинский лабораторный технолог и Спесивцева Елена Валерьевна — медицинский лабораторный техник.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *